Float-A-Lyzer G2 (透析管)采用了仕必純spectrum的生物技術(shù)級纖維素酯 (CE) 膜,并集高效、便捷及安全等設(shè)計優(yōu)點于一體,是新一代即用型 透析裝置。 纖維素酯膜是一種蛋白吸附性低的合成膜,不含任何重金屬或硫 化物污染物,有9種精確的截留分子量。管狀膜管防止樣品被稀 釋,頂端開放式設(shè)計允許高效樣品回收。只有 Float-ALyzer G2 可 確保高達95-98%的樣品回收率,同時又保證 99% 的樣品純度及 小于5%的樣品稀釋。 帶有O型密封圈的防漏螺口蓋,便于使用附帶的移液管(5 ml和10 ml容量規(guī)格)或移液管吸頭(1 ml容量規(guī)格)進行樣品加載及樣 品回收等,并避免針頭穿刺的危險。包裝中附帶的浮圈保證樣品 在透析期間處于垂直懸浮狀態(tài)。細長型設(shè)計允許在同一緩沖液容 器中同時透析多種樣品。Float-A-Lyzer G2 (透析管)甘油干燥包裝,包含所有部件以供即時使用。
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應(yīng)用 Float-A-Lyzer G2 透析裝置可用于多種應(yīng)用,
例如:
• 緩沖液置換和脫鹽 • 電泳或HPLC樣品前處理:除鹽分,例如氯化鈉、清潔劑、 硫酸銨、氯化銫、表面活性劑等
• 生物大分子(DNA、蛋白質(zhì)、病毒、抗體、肽、聚合物等) 分離純化,去除小分子雜質(zhì)。
• 樣品濃縮(配合使用Spectra/Gel ® 吸水劑)
• 離子擴散速率研究 • 親和研究(受體-配體結(jié)合研究) 藥物釋放實驗
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9 種截留分子量:
0.1-0.5KD、0.5-1.0KD、3.5-5KD、8-10KD、 20KD、5KD、100KD、300 KD和1,000KD
3 種容量規(guī)格:
1 ml、5 ml 和 10 ml
spectrum(透析管)即用型透析裝置使用說明:
1. 從包裝中取出 Float-A-Lyzer G2(透析管)。一只手握牢頂端外圈,另 一只手握住膜管套,緩慢向相反方向旋轉(zhuǎn)。膜管與管套分離 后,小心地將膜管從管套中取出,切勿彎折,以防膜破損。 注:必須從 Float-A-Lyzer G2(透析管) 頂端外圈處開始操作,以免膜 破損。
2. 膜預(yù)濕處理:為充分有效地潤濕膜,實現(xiàn)膜滲透性。首先將 Micro Float-A-Lyzer(透析管) 裝置浸泡在 10% 的乙醇中;然后用去離子水沖洗,浸泡。( a.擰下蓋子,在裝置中注入 10% 的異丙醇 (IPA) 或 10% 的乙 醇,擰緊蓋子,然后將裝置全部浸入乙醇溶液中,放置 10 分鐘。 b.取出裝置,擰下蓋子,吸出裝置內(nèi)部的乙醇。將裝置倒置 并抖出內(nèi)部殘留的液滴。 c.用去離子水沖洗裝置,然后在裝置中注入去離子水, 蓋好蓋子,然后將裝置浸入去離子水中,保持 15-20分鐘。 d.重復(fù)步驟 (b),去除沖洗水。再次用去離子水沖洗裝置,并 抖出多余液體。(膜一旦潤濕,切勿使其變干。)
3. Float-A-Lyzer G2(透析管) 預(yù)潤濕后,如實驗所需可用透析緩沖液沖洗 膜內(nèi)部。切勿使?jié)櫇襁^的膜變干。
4. 用移液管小心將樣品注入膜內(nèi)部和底部,一邊注入樣品,一邊 緩慢抽出移液管,然后擰緊蓋子以確保密封。注:5ml 和 10 ml 規(guī)格的包裝中配有一次性移液管。
5. 將 Float-A-Lyzer G2 (透析管)的膜管插入浮圈,浮圈置于頂端部件的 卡圈下方。將 Float-A-Lyzer(透析管) 垂直懸浮在含有磁力攪拌條的 透析容器中,調(diào)節(jié)攪拌速率,形成溫和的渦流。避免渦流過 于激烈,防止裝置卷入渦流中。
6. 根據(jù)特定應(yīng)用要求進行透析。一般情況下,室溫條件下進行樣 品透析,透析過程可整夜進行(12-20小時),并更換3-4 次 緩沖液(透析進行2-4小時、6-8小時及10-14小時后)。 注:如要中間取樣,只需將裝置從透析容器中取出,擰開蓋 子并吸出少量樣品用于測試;之后,再將密封好的裝置放回 透析容器中。
7. 透析完成后,擰開螺口蓋,將移液管插入膜底部,緩慢吸出全 部樣品,確保每滴樣品的回收。 8. 將樣品注入適當?shù)娜萜髦?,丟棄用過的 Float-A-Lyzer G2(透析管)。
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